1. INTRODUCCIÓN
La
lechuga ha sido cultivada desde tiempo remotos y forma parte del acervo
gastronómico de varias culturas, desde épocas ancestrales hasta la era moderna,
siendo un alimento altamente valorado y empleado con múltiples propósitos,
principalmente alimenticios (Salem et al., 2023). Asimismo, es reconocida por
sus cualidades organolépticas, se ha demostrado que juega un rol importante la
prevención de enfermedades asociadas al estrés oxidativo y que posee
propiedades ansiolíticas (Holzman, 2021; Maggioni et al., 2018).
Dada la importancia de la lechuga y
su vulnerabilidad a plagas, enfermedades y condiciones climáticas adversas, han
surgido alternativas para maximizar su producción, donde la hidroponía ha
emergido como una técnica eficiente para el cultivo de lechuga, con
rendimientos superiores a los métodos tradicionales, dado que es un entorno
controlado que optimiza el crecimiento y maximiza el rendimiento, tal como
señalan Fussy y Papenbrock (2022) y Jaimes-Terceros y Blanco (2019).
A pesar de que el cultivo hidropónico
de lechuga es una forma de agricultura sostenible, la misma presenta
obstáculos, los cuales pueden afectar el desarrollo vegetativo del cultivo
causados por deficiencias nutricionales, desequilibrios o carencia de nutrientes,
lo cual afecta el proceso fotosintético, problemas que puede ser agravado por
la presencia de patógenos y metales pesados o problemas de salinidad generado
por el manejo inadecuado de la solución nutritiva (Suárez-Cáceres et al., 2021;
Xavier et al., 2021; Dhal et al., 2023).
No obstante, las posibles
limitaciones, la hidroponía está ganando popularidad como una alternativa
sostenible para la producción de lechuga, sin embargo, la ausencia de una
matriz de suelo plantea desafíos que requieren un manejo preciso de los
nutrientes, mediante un control efectivo del estrés salino y estrategias
proactivas para el manejo de enfermedades, en este orden de ideas el empleo de
microorganismos promotores del crecimiento vegetal (PGPM) han surgido como una
solución prometedora para superar estos problemas (Mourouzidou et al., 2023).
Los microorganismos benéficos juegan
un rol importante en la sanidad vegetal, su empleo controlado en sistemas
hidropónicos, es una práctica adecuada para aumentar la eficiencia del cultivo,
en este sentido Mourouzidou et al. (2023) demostraron que los géneros Bacillus,
Pseudomonas y Azospirillum son los más eficientes PGPM dado que producen
beneficios significativos y cambios en la morfología de la arquitectura de las
raíces. Adicionalmente su inoculación puede revertir los efectos de la
deficiencia de nutrientes y el estrés salino.
Dentro de los PGPM destacan los
géneros Pseudomonas y Trichoderma, los cuales fueron reconocidos por sus
cualidades antagónicas, que los convierten en agentes de biocontrol altamente
efectivos en sistemas hidropónicos (Poveda and Eugui, 2022), asimismo la
inoculación con Bacillus subtilis y Azospirillum brasilense
demostraron un incremento del oxígeno disuelto, mejorando los parámetros de
calidad del agua y beneficiando el crecimiento y el metabolismo de plantas
(Aijaz et al., 2024).
Los beneficios producto del uso de
inoculantes microbianos en sistemas hidropónicos, se debe a que los mismos
pueden interactuar con las plantas de cultivo para mejorar su resistencia al
ataque de patógenos, el crecimiento y el desarrollo de las plantas, dado que
sus metabolitos secundarios han sido reconocidos por su excelente capacidad de
biocontrol, lo cual permite la producción de lechugas libres de contaminantes
al reducir el uso de agroquímicos (Elnahal et al., 2022).
Considerando lo anteriormente
expuesto, el propósito de esta investigación fue determinar el efecto de la
aplicación de microorganismos con potencial benéfico en lechuga cultivada en un
sistema hidropónico mediante la inoculación de Actinomicetos, Trichoderma
harzianum, Bacillus subtilis y Natrum muriaticum con la
finalidad de cuantificar su efecto sobre el desarrollo vegetativo y rendimiento
en la lechuga (Lactuca sativa) en sistemas hidropónicos.
2. METODOLOGÍA
2.1. Localización
La presente investigación se llevó a
cabo en la Universidad Técnica Estatal de Quevedo, campus “La María”, en un
sistema hidropónico bajo el invernadero de la facultad de ciencias Agrarias y
Forestales, localizada en el km 7.5 de la vía Quevedo – El Empalme cuyas
coordenadas son: Latitud 1° 5' 3" sur, Longitud 79° 30' 1" oeste
(Tabla 1).
Tabla 1
Condiciones meteorológicas de Campus “La María” UTEQ.
|
Parámetros
|
Promedio
|
|
Temperatura
media anual
|
24.9
°C
|
|
Humedad
relativa media anual
|
84
%
|
|
Precipitación
media anual
|
2295.1
|
|
Heliofanía
promedio anual
|
870.2
(Hs)
|
|
Topografía
|
Plana
|
2.2. Diseño
experimental
En este ensayo se empleó un Diseño
Completamente al Azar (DCA) constituido por tres tratamientos (Tabla 2), tres
repeticiones y un tratamiento control (sin Microorganismos), un total de cuatro
tratamientos para lo cual se emplearon 10 plantas por repetición, ´para un
total de 30 plantas por tratamiento.
Tabla 2
Tratamientos evaluados
|
Tratamientos
|
Microorganismos benéficos
|
|
T1
|
Actimomicetos
|
|
T2
|
Trichoderma harzianum
|
|
T3
|
Bacillus subtilis
|
|
T4
|
Natrum muriaticum
|
|
T5
|
Control (agua)
|
2.3. Manejo
de aplicación de microorganismos
Para la investigación, los
inoculantes se aplicaron en tres ocasiones, a los 14, 28 y 42 días después del
trasplante (DDT). Cabe mencionar que los nutrientes se aplicaron directamente
al agua en el sistema hidropónico con una frecuencia de 15 días durante las
primeras semanas. Posteriormente, las aplicaciones de nutrientes se realizaron
de manera foliar, utilizando 10 mL por litro de agua, el material empleado para
la siembra fue la semilla de lechuga REGINA 500 variedad Crespa Lisa, cuyo
transparente se realizó cuando la planta tenía siete semanas de edad y contaba
con cuatro a cinco hojas verdaderas.
2.4. Sistema
de recirculación de agua y fertilización
Se utilizaron las bombas de agua
instaladas en el sistema hidropónico, donde se aplicaron productos comerciales
biológicos de la marca Q-ba producidos por la empresa IBO de macro y microelementos
para su desarrollo en dosis de 10 mL por litro de agua de manera foliar.
2.5. Manejo
de arvenses
Se realizó de forma manual dentro del
invernadero para que no se vuelvan hospederos de insectos que pueden afectar el
cultivo.
2.6. Cosecha
Esta labor se realizó de forma manual
en el invernadero cuando el cultivo alcanzó la edad promedio de los 80 días
desde el momento que fue sembrada en los semilleros.
2.7. Variables
evaluadas
Las variables de crecimiento se
evaluaron desde el momento del trasplante hasta que finalizó el desarrollo
vegetativo (14, 28 y 42 días después del trasplante).
Se registró la altura de planta (cm)
desde la base del tallo hasta el ápice de la hoja, asimismo se contó el número
de hojas en los intervalos de tiempo definidos, se registró el largo y ancho de
la hoja (cm), por último, la clorofila de la hoja que se midió con Medidor
portátil de clorofila o clorofilómetro (SPAD-502; Spectrum Technologies, Plainfield,
Illinois, EE. UU.). expresado en nm.
Al finalizar el desarrollo vegetativo
a los 42 días después del trasplante (DDT) se midió el peso fresco de la planta
y raíces (gramos) y el rendimiento (kg m-2), para el cual se
cuantificando el peso total de las lechugas recolectadas por tratamiento.
2.8. Análisis
estadístico
Se realizó un análisis de varianza de
clasificación doble (ANOVA) para identificar la existencia de efectos
principales y de interacción entre las variables analizadas. Con el proposito
de determinar las diferencias estadísticamente significativas entre los grupos,
se utilizó la prueba de comparación múltiple de medias Tukey. Los datos fueron
procesados empleando el paquete estadístico IBM SPSS Statistics (Version 27).
3. RESULTADOS
A continuación, se muestran los
resultados para los parámetros de crecimiento, los cuales se evaluaron desde el
trasplante hasta que finalizó el desarrollo vegetativo a los 14, 28 y 42 DDT,
posterior a la aplicación de los inoculantes microbianos y cuyos hallazgos se
describen a continuación.
3.1. Altura de plantas
La altura de planta presentó
diferencias significativas tras la aplicación de los inoculantes (Tabla 3), se
puede observar que a los 14 DDT no existieron diferencias significativas, pero
si a los 28 DDT donde los tratamientos T1 (Actinomicetos) y T2 (T. harzianum)
mostraron la mayor altura de planta con 13.13 y 12. 84 cm respectivamente,
mientras que los los 42 DDT los tratamientos con T. harzianum (T2) y N.
muriaticum (T4) presentaron la mayor altura de planta con 23.87 y 23.90 cm
respectivamente.
Tabla 3
Altura de planta (cm)a los 14, 28 y 42 DDT en cultivo de lechuga
después de la aplicación de microorganismos potencialmente benéficos en
sistemas hidropónicos.
|
Tratamiento
|
14
DDT
|
28
DDT
|
42
DDT
|
|
T1
|
11.77
a
|
13.13
a
|
19.91
b
|
|
T2
|
11.31
a
|
12.84
a
|
23.87
a
|
|
T3
|
12.09
a
|
10.65
c
|
18.96
b
|
|
T4
|
11.00
a
|
12.20
ab
|
23.90
a
|
|
T5
|
12.03
a
|
12.23
ab
|
23.35
ab
|
*Las letras diferentes
indican diferencias significativas según prueba de Tukey (p<0.05)
3.2. Número de hojas
El número de hojas presentó
diferencias significativas tras la aplicación de los inoculantes, observando en
la Tabla 4, que a los 14 DDT existieron diferencias significativas entre los
tratamientos, donde el T3 inoculado con B. subtilis mostro el mayor
número de hojas con 9,93, mientras que a los 28 DDT los tratamientos T4 (N.
muriaticum), T1 (Actinomicetos) y T2 (T. harzianum) presentaron el
mayor número de hojas con 10.80 10.47 y 10.27 respectivamente, finalmente los
42 DDT los tratamientos T4 y el T2 presentaron el mayor número de hojas con 24.27
y 23.20 respectivamente.
Tabla 4
Número de hojas a los 14, 28 y 42 DDT en cultivo de lechuga
después de la aplicación de microorganismos potencialmente benéficos en
sistemas hidropónicos.
|
Tratamiento
|
14 DDT
|
28 DDT
|
42 DDT
|
|
T1
|
8.47 b
|
10.27 a
|
22.27 b
|
|
T2
|
9.00 b
|
10.47 a
|
23.20 a
|
|
T3
|
9.93 a
|
8.60 b
|
18.50 c
|
|
T4
|
9.00 b
|
10.80 a
|
24.27 a
|
|
T5
|
9.73 b
|
9.27 b
|
19.80 c
|
*Las letras diferentes
indican diferencias significativas según prueba de Tukey (p<0.05)
3.3. Ancho de hoja
Al igual que lo observado para la
altura de planta y número de hojas, el ancho de hojas presentó diferencias
significativas tras la aplicación de los inoculantes, observando en la Tabla 5,
que a los 14 DDT no existieron diferencias significativas, pero si a los 28 DDT
donde los tratamientos T1 (Actinomicetos), T2 (T. harzianum) y T4 (N.
muriaticum) mostraron el mayor ancho de hojas, con valores de 7.11, 7.11 y
6.61 cm respectivamente, por último, a los 42 DDT los tratamientos T2 y T1
presentaron el mayor ancho de hojas con 9.21 y 8.60 cm respectivamente.
Tabla 5
Ancho de hojas (cm) a los 14, 28 y 42 DDT en cultivo de lechuga
después de la aplicación de microorganismos potencialmente benéficos en
sistemas hidropónicos.
|
Tratamiento
|
14 DDT
|
28 DDT
|
42 DDT
|
|
T1
|
5.27 a
|
7.11 a
|
8.61 a
|
|
T2
|
5.66 a
|
7.11 a
|
9.21 a
|
|
T3
|
5.99 a
|
5.60 b
|
8.01 b
|
|
T4
|
6.00 a
|
5.20 b
|
8.00 b
|
|
T5
|
5.91 a
|
6.61 a
|
8.10 b
|
*Las letras diferentes
indican diferencias significativas según prueba de Tukey (p<0.05)
3.4. Largo de hoja
El largo de hojas presentó
diferencias significativas tras la aplicación de los inoculantes (Tabla 6), a
los 14 DDT no existieron diferencias significativas entre los tratamientos,
pero si a los 28 DDT donde los tratamientos T2 inoculado con T. harzianum,
T1 inoculado con actinomicetos y el T4 (N. muriaticum) mostraron el
mayor largo de hojas con 10.44, 9.91 y 9.85 cm respectivamente y a los 42 DDT
fue el tratamiento T4 (N. muriaticum), T1 inoculado con actinomicetos y
T3 inoculado con B. subtilis los que presentaron el mayor largo de hojas
con 11.32, 11.20 y 10.63 cm respectivamente.
Tabla 6
Largo de hojas (cm) a los 14, 28 y 42 DDT en cultivo de lechuga
después de la aplicación de microorganismos potencialmente benéficos en
sistemas hidropónicos.
|
Tratamiento
|
14
DDT
|
28
DDT
|
42
DDT
|
|
T1
|
9.57
a
|
9.91
a
|
11.20
a
|
|
T2
|
9.59
a
|
10.44
a
|
9.29
b
|
|
T3
|
9.68
a
|
8.53
b
|
10.63
a
|
|
T4
|
10.00
a
|
9.80
a
|
11.00
a
|
|
T5
|
9.64
|
9.45
b
|
11.32
b
|
*Las letras diferentes
indican diferencias significativas según prueba de Tukey (p<0.05)
3.5. Clorofila de la hoja
Con respecto a la variable clorofila
de la hoja, en la Figura 1 se observa que existen diferencias significativas (p<0.05)
entre los tratamientos, siendo el T4 inoculado con N. muriaticum con 27.87
nm superior al resto de los tratamientos seguido del tratamiento T3 (B.
subtilis), T2 (T. harzianum) y T5 (control) con 25.81 y 22.31 nm
respectivamente, mientras que los valores más bajos se observaron en el
tratamiento T1 (Actinomicetos) con un valor de 21.71 nm.
Figura 1.
Clorofila en hojas en cultivo de lechuga después de la
aplicación de microorganismos potencialmente benéficos en sistemas
hidropónicos. Las letras diferentes indican diferencias significativas según
prueba de Tukey (p<0.05)
%20Cultivada%20en%20un%20Sistema%20Hidropónico_archivos/image002.gif)
3.6. Peso fresco de la planta
Con relación a la variable peso fresco de la planta en
la Figura 2 se observa que existen diferencias significativas (p<0.05) entre
los tratamientos, siendo el T4 (N. muriaticum), el T2 (T. harzianum)
y el T3 (B. subtilis) con 43.90, 43.73 y 40.61 gramos respectivamente
fueron estadísticamente superiores al resto de los tratamientos, observando que
el valor más bajo en el T5 (control) con el valor de 27.60 gramos.
Figura 2.
Peso fresco de la planta en cultivo de lechuga después
de la aplicación de microorganismos potencialmente benéficos en sistemas
hidropónicos. Las letras diferentes indican diferencias
significativas según prueba de Tukey (p<0.05)
%20Cultivada%20en%20un%20Sistema%20Hidropónico_archivos/image003.gif)
En la Figura 3, para la variable peso fresco de raíces
se observa que el tratamiento T2 (T. harzianum) y el T4 (N.
muriaticum) fueron significativamente superiores (p<0.05) al resto de
los tratamientos valores de 14.77 y 11.40 gramos, respectivamente, mientras que
los valores más bajos se observaron en los tratamientos T1 y T5 con valores de
9.31 y 8.46 gramos respectivamente.
Figura 3.
Peso fresco de raíces en cultivo de lechuga después de
la aplicación de microorganismos potencialmente benéficos en sistemas
hidropónicos. Las letras diferentes indican diferencias significativas según
prueba de Tukey (p<0.05)
%20Cultivada%20en%20un%20Sistema%20Hidropónico_archivos/image004.gif)
Para la variable rendimiento los
resultados en la Figura 4 se observa que existen diferencias significativas (p<0.05)
entre los tratamientos, presentando el mejor rendimiento el tratamiento T4 (N.
muriaticum) con 0.2 kg m-2, seguido de los tratamientos T2 (T.
harzianum) y el T5 (control) con 0.18 y 0.17 kg m-2
respectivamente, los valores más bajos correspondieron a los tratamientos T3 y
T1 con 0.12 y 0.10 kg m-2 respectivamente.
Figura 4.
Rendimiento en cultivo de lechuga después de la
aplicación de microorganismos potencialmente benéficos en sistemas hidropónicos.
Las letras diferentes indican diferencias
significativas según prueba de Tukey (p<0.05)
%20Cultivada%20en%20un%20Sistema%20Hidropónico_archivos/image005.gif)
4. DISCUSIÓN
Los hallazgos muestran que la
inoculación con Trichoderma harzianum y Natrum muriaticum
fueron los tratamientos que produjeron los mejores resultados en todas las
variables evaluadas, particularmente en un incremento de actividad
fotosintética y rendimiento de la lechuga, superando el crecimiento vegetativo,
que se observó con la inoculación del sistema hidropónico con Bacillus
subtilis y Actinomicetos, respectivamente, pero que se describen
fundamentalmente los beneficios con la inoculación con Trichoderma
harzianum y Natrum muriaticum por ser los más eficientes, los cuales
se discuten a continuación:
4.1. Efectos de los microorganismos sobre la altura de
plantas
Los resultados fueron similares a los
reportados por Leu et al. (2023), quienes al inocular cepas de Trichoderma y
Bacillus en lechuga generaron una mayor altura de plantas, así como un
incremento en el largo y ancho de hojas, dado que estos hongos producen
compuestos auxínicos como el ácido Indol acético (Meza et al., 2015), que
estimula la germinación, el crecimiento y desarrollo radicular, contribuyendo a
la mejor asimilación de nutrientes.
4.2. Efectos de Trichoderma sobre número de hojas
La inoculación con Trichoderma también
llevo a un incremento en el número de hojas, lo cual puede atribuirse a la
capacidad de los inoculantes biológicos de producir hormonas, vitaminas,
enzimas y otros compuestos que mejoran el crecimiento de las plantas, lo que
conlleva al aumento de la disponibilidad y la absorción de nutrientes, dado
que promueve en las plantas un mayor crecimiento y rendimiento
(Stojanović et al., 2020), resultado que también se observó para el largo
y ancho de hoja en lechuga, dado que Trichoderma además de promover el
crecimiento foliar puede controlar patógenos que afectan el cultivo, gracias a
la secreción de metabolitos secundarios (Contreras-Cornejo et al., 2015).
Similarmente, Bacillus subtilis también promueve el crecimiento mediante
la producción de fitohormonas y sideróforos, y el aumento de la traslocación de
nutrientes (Kang et al., 2019).
4.3. Efectos de Trichoderma a la adaptación a factores
abióticos extremos
Además de un mayor crecimiento
vegetativo la inoculación microbiana permite a las plántulas de adaptarse a
numerosos factores de estrés, como el daño de plagas y patógenos relacionados
con hongos, bacterias, virus y nematodos (Ibrahim et al., 2020). Además de
otros factores abióticos como la sequía, la salinidad y la deficiencia de nutrientes
del suelo (Kamanga et al., 2018). En ese sentido Swain et al. (2018),
comprobaron la capacidad de Trichoderma para inducir la tolerancia de la
planta hospedante a estrés abiótico, así como también a condiciones de
salinidad y sequía, por lo que contribuye al crecimiento y desarrollo vegetal.
4.4. Efectos de Trichoderma harzianum sobre la producción
de biomasa
El crecimiento vegetativo se tradujo
en mayor producción de biomasa vegetal, cuyos resultados concuerdan con los
reportados por Pereira et al (2019), quienes obtuvieron un aumento en la masa
fresca con cepas de T. harzianum y T. asperellum, reportando que
la ganancia de masa fresca de la parte aérea fue aproximadamente un 40% mayor
que el control, lo cual está relacionado a la síntesis de hormonas vegetales
como auxinas y etileno, en ese mismo orden de ideas Ji et al. (2020) quienes
probaron el efecto bioestimulante aplicando un biofertilizante a base de un
consorcio de esporas de cuatro cepas de Trichoderma en cultivo de col china en
invernadero, encontrando un mayor peso fresco.
El mayor peso de las plantas puede atribuirse
a que algunas especies de Trichoderma son productoras de una variedad de
compuestos orgánicos volátiles, que son capaces de inhibir fitopatógenos y
promover el crecimiento de las plantas (Estrada-Rivera et al., 2019; Kaddes et
al. 2019; Guo et al. 2021), los cuales son pequeñas moléculas con alta
volatilidad a temperatura ambiente que pueden difundirse fácilmente a través
del suelo, mostrando así su potencial para uso en agricultura.
Un mayor peso fresco en las plantas
inoculadas con Trichoderma, de acuerdo con Asghar, y Kataoka (2021) es producto
a que este microorganismo está asociado con un incremento en la mineralización
del nitrógeno, a una mayor actividad biológica en el suelo, especialmente con
la actividad enzimática, específicamente con la fosfatasa y la liberación de
metabolitos secundarios, que cumplen doble función: antagonista de patógenos y
promotora del crecimiento vegetal.
4.5. Efectos de Trichoderma harzianum sobre el desarrollo
de raíces
La inoculación con Trichoderma,
también impacto de manera positiva el desarrollo de las raíces, resultados
semejantes fueron obtenidos por Moreira et al. (2022), quienes encontraron que
la inoculación con A. brasilense y T. harzianum aumentó en el
cultivo de lechuga el crecimiento de las raíces en un 47% y 20%,
respectivamente, lo cual a su vez mejoro la acumulación de K, Mn, Cu y Zn, lo
que ratifica lo señalado por Rouphael et al. (2020). quienes demostraron que T. harzianum,
promovió el crecimiento de raíces de la lechuga. longitud y materia seca en
comparación con el control, lo cual es producto de que Trichoderma produce
hormonas como indol-3-etanol, ácido indol-3-acético e indol-3-acetaldehído, los
cuales estimulan el desarrollo de raíces laterales, lo que mejora la superficie
radicular e indirectamente aumenta la absorción de agua y nutrientes, procesos
todos relacionados con la fotosíntesis (Carillo et al., 2020).
4.6. Efectos beneficiosos de la inoculación con Natrum
muriaticum
Además de Trichoderma, la inoculación
con Natrum muriaticum produjo un mejor desarrollo vegetativo de las
plantas de lechuga al observar valores estadísticamente similares a los
obtenidos con Trichoderma para las variables altura de plantas, número de
hojas, contenido de clorofila, peso fresco de la planta, peso fresco de raíces,
así como en el rendimiento, lo que demuestra los beneficios que se obtienen por
la inoculación con este microorganismo.
Los beneficios de la inoculación con
este microorganismos ya habían sido reportado por Mazón et al. (2022) quienes
al evaluar el efecto de Natrum muriaticum sobre la fotosíntesis y la
biomasa de plantas de albahaca (Ocimum basilicum L) encontrando valores
más altos de estas variables luego de la inoculación, lo cual es similar a los
resultados obtenidos para estas investigación para el cultivo de la lechuga,
con la ventaja adicional que en el ensayo con cultivo de albahaca los resultados
se lograron bajo condiciones de estrés salino.
En investigaciones previas
Mazón-Suástegui et al. (2019) ya habían destacada el rol de N. muriaticum
para la producción de hortalizas en suelo con altos valores de salinidad, pero
estos autores destacan beneficios adicionales, debido a la presencia de
oligoelementos, como magnesio biodisponible, cloruro de potasio, hierro y
calcio en cantidades traza, los cuales contribuyen a mejorar la fertilidad del
cultivo y por lo tanto garantizar un mayor crecimiento e incremento de los
rendimientos.
Aunque no se ha reportado en esta
investigación el crecimiento por la inoculación con N. muriaticum se
debe a los beneficios para el control de patógenos, lo cual abriría nuevas
líneas de investigación para la producción de hortalizas bajo practicas
sostenibles, dado que este microorganismo puede inhibir hasta en un 66 % el
crecimiento de Aspergillus niger (Faedo et al., 2024), el cual es un
hongo altamente patógeno en cultivos hortícolas.
4.7. Inoculación con microorganismo y rendimiento de la lechuga
A pesar de que el Trichoderma y N.
muriaticum promovieron un mayor desarrollo vegetativo, expresado en mayor
biomasa aérea y biomasa de raíces, los rendimientos fueron inferiores a los
reportados por Jordan et al. (2018) en sistemas acuapónicos (2.88 kg m-2)
e hidropónicos (2.58 kg m-2), aunque los valores superan
notablemente los rendimientos en sistemas convencionales son inferiores a los
normalmente reportado en sistemas hidropónico, lo cual puede ser atribuido a
variables como el pH, la conductividad eléctrica y la temperatura del agua.
Además de T. harzianum y N.
muriaticum la inoculación con B. subtilis y Actinomicetos logró
promover un mayor desarrollo vegetativo y de raíces, con valores que superaron
los reportados en el tratamiento control y cuyos resultados son similares los
reportados por otras investigaciones llevadas a cabos en el cultivo de lechuga.
El crecimiento foliar alcanzado con
la inoculación con T. harzianum y N. muriaticum se produce con
una mayor asimilación neta de CO2 en el proceso fotosintético que
permite la formación de nuevas hojas y un aumento de la masa vegetal, lo que se
traduce en un mayor rendimiento, debido a que se logra aumentar la eficiencia
fotosintética, la asimilación de carbono y la adquisición de nutrientes por las
raíces, promoviendo un mayor desarrollo vegetativo (Fonseca et al., 2022).
Finalmente cabe destacar que en
algunas variables se observó que el control presento un mejor desempeño que los
inoculantes microbianos y esto ocurre porque además de la secreción de
metabolitos secundarios y sustancias promotoras del crecimiento, algunas de las
cepas de microorganismos como Trjchoderma (Al-Taie et al., 2020), B. subitlis
(Li et al., 2023) y Actinomicetos (García-Bernal et al., 2025) pueden liberar
sustancias alelopáticas que afectan el crecimiento vegetal.
5. CONCLUSIONES
El mejor tratamiento fue el inoculado
con Trichoderma harzianum y Natrum muriaticum por lo que se
comprueba el potencial benéfico de los mismos, dada su capacidad para controlar
plagas y patógenos y la producción de sustancias promotoras del crecimiento.
Los resultados confirman que la
inoculación con T. harzianum y N. muriaticum, promueve un mayor
desarrollo vegetativo y rendimiento de lechuga en hidroponía, ofreciendo una
alternativa sostenible y rentable a la fertilización química.
CONFLICTO DE INTERESES
Los Autores declaran si existen o no
conflicto de intereses con su investigación
CONTRIBUCIÓN DE AUTORÍA
|
Participar activamente
en:
|
Sánchez,
T.
|
Conforme.
N.
|
Cabrera,
G.
|
Vera,
J.
|
Abasolo,
F.
|
|
Conceptualización
|
X
|
|
|
|
|
|
Análisis formal
|
X
|
|
|
|
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La discusión de los
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Revisión y aprobación de la
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